IF:13.6 《BM》苏州大学程亮/巩飞:金属离子干扰疗法强效激动剂:多种细胞死亡程序以增强肿瘤金属免疫疗法
专栏:学术前沿
发布日期:2026-06-26
作者:创赛科研

研究背景:

内源性金属离子对细胞生理过程至关重要,但其动态平衡严重失调时,会阻断细胞内代谢,导致多种细胞死亡途径(如钠/钾离子失衡、钙超载、铁死亡、铜死亡、凋亡、焦亡)激活。MIIT利用金属离子干扰肿瘤细胞离子稳态,诱导高氧化应激、激活程序性细胞死亡,并调控免疫细胞增强抗肿瘤免疫。然而,MIIT面临多金属离子高效递送和细胞代谢抵抗的挑战,限制其发展。本研究开发了一种新型MIIT启动子——二硫仑(DSF)负载的ZnCuAl层状双氢氧化物(ZCA-LDH@DSF),在酸性肿瘤微环境中pH响应性释放Zn²⁺/Cu²⁺DSF,实现多离子协同和原位药物激活。通过纳米技术整合多离子效应,该策略放大免疫原性细胞死亡(ICD),抑制肿瘤生长和转移,克服单一离子疗法的局限性。



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针对上述问题,苏州大学程亮教授、巩飞副教授团队构建了一种新型MIIT引发剂——负载双硫仑(DSF)的ZnCuAl-LDH层状双氢氧化物复合材料,以实现多种金属离子的高效共递送,并增强金属离子在细胞内的滞留能力。在酸性环境中,ZCA-LDH@DSF引发剂能够实现Zn²⁺/Cu²⁺和DSF药物的pH响应性释放。一方面,Cu²⁺与DSF原位结合形成高毒性产物CuET,诱导DNA损伤和细胞凋亡。另一方面,细胞内Cu²⁺超载扰乱三羧酸循环(TCA),导致显著的铜死亡。同时,细胞内Zn²⁺抑制铜转运蛋白ATP7A和ATP7B的表达,减少Cu²⁺外排并促进细胞内Cu²⁺积累,从而进一步放大铜死亡效应。此外,细胞内Zn²⁺还通过caspase-1/消皮素D(GSDMD)依赖途径诱导焦亡,与CuET诱导的细胞凋亡和铜死亡协同作用,显著增强免疫原性细胞死亡(ICD),这有利于肿瘤中的MIIT。因此,ZCA-LDH@DSF展现出诱导MIIT的卓越能力,从而触发多种程序性细胞死亡并抑制肿瘤生长和转移,为抗癌治疗提供了一种新的治疗模式。该文章于2025年12月3日以A powerful agonist for metal ion interference therapy: Multiple programs of cell death to amplify tumor metalloimmunotherapy为题发表于Biomaterials》(DOI10.1016/j.biomaterials.2025.123888)。


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方案1. LDH作为MIIT启动子的示意图:多种程序性细胞死亡方式放大肿瘤金属免疫治疗。(A)通过典型的共沉淀法合成ZCA-LDH,然后负载DSF。(BZCA-LDH@DSF诱导多种类型的金属离子干扰介导的细胞死亡(凋亡、铜死亡、焦亡和免疫原性细胞死亡)。

(1)ZCA-LDH@DSF的合成与表征

通过共沉淀法合成ZCA-LDH纳米片,随后负载DSF获得ZCA-LDH@DSF。TEM显示ZCA-LDH呈纳米片结构,DSF负载对其形貌影响甚微(图1B、C);EDS元素映射证实Zn、Cu、Al、S均匀分布(图1D);TGA测得DSF负载量约9%(图1H);水动力直径和表面电荷在负载前后无显著变化(图1E、G);XRD显示DSF负载后发生轻微蓝移(图1I);XPS中Cu²⁺/Cu⁺特征峰在DSF负载后显著变化,归因于Cu²⁺配位转化为Cu⁺(图1J);FT-IR光谱显示ZCA-LDH@DSF与裸DSF特征吸收相似。紫外-可见分光光度法显示DSF负载率在12 h达到饱和(图1L)。ZCA-LDH@DSF在水性介质和1640培养基中孵育14天粒径无显著变化,证实其分散稳定性(图1F)。pH响应释放实验显示,缓冲液中265 nm和425 nm处吸收峰随时间延长逐渐增强,表明CuET累积形成(图1M);ICP-OES测定显示弱酸性条件下Cu²⁺和Zn²⁺释放速率显著高于中性条件(图1N、O);酸性缓冲液中ZCA-LDH@DSF快速分解,溶液pH最终趋于中性(图1P);TEM显示纳米材料结构完全坍塌并产生超小纳米点。


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1. ZCA-LDH@DSF纳米片的合成与表征(A) ZCA-LDH@DSF纳米片合成过程示意图。(B&C) ZCA-LDHZCA-LDH@DSF的透射电镜图像。(D) ZCA-LDH@DSF的元素分布图(ZnCuAlS)。(E&G) ZCA-LDHZCA-LDH@DSFZeta电位(E)和水合粒径测量(G)(F) ZCA-LDHZCA-LDH@DSFRPMI 1640培养基和ddH₂O中放置0天和14天的水合粒径测量。(H) ZCA-LDHZCA-LDH@DSF的热重分析结果。(I) ZCA-LDHZCA-LDH@DSFX射线衍射图谱。(J) ZCA-LDHZCA-LDH@DSFCu 2p X射线光电子能谱。(K) ZCA-LDHZCA-LDH@DSF的傅里叶变换红外光谱。(L&M) ZCA-LDH在不同时间的双硫仑负载量和铜离子-双硫仑络合物生成曲线。(N&O) ZCA-LDH@DSF在不同pH缓冲液中的Zn²⁺Cu²⁺释放曲线。(P) 加入ZCA-LDH@DSFpH=6.4缓冲液的pH值变化。

(2)体外实验中ZCA -LDH@ DSF 诱导的细胞凋亡

ZCA-LDH在Cu²⁺浓度超过10 μg/mL时仍无明显细胞毒性,DSF单独对CT26细胞活力影响甚微,两者均具良好生物相容性(图2B、C);而ZCA-LDH@DSF显著降低CT26细胞活力,AM/PI染色显示其死细胞比例最高(图2D、E)。RBH检测显示,ZCA-LDH@DSF孵育后细胞内绿色荧光信号随时间延长而增强,6 h达最大值,表明其被细胞高效内化(图2F)。RNA测序显示ZCA-LDH@DSF组有2539个差异表达基因(1990个上调,549个下调),主成分分析和热图证实其与对照组基因表达谱存在显著差异(图2G、H);GO分析显示差异基因主要参与细胞周期调控和DNA损伤相关过程(图2I);KEGG和GSEA分析显示MAPK、p53和TNF等凋亡相关通路显著正富集(图2J、L)。γ-H2AX免疫荧光染色显示CA-LDH@DSF和ZCA-LDH@DSF处理组癌细胞核中均检测到显著信号,表明CuET诱导严重核损伤(图2M);Annexin V-FITC/PI流式细胞术显示ZCA-LDH@DSF诱导细胞凋亡作用最强(图2N);细胞周期分析显示ZCA-LDH@DSF处理组出现S期积累,表明其显著诱导细胞周期阻滞(图2K)。


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图2. ZCA-LDH@DSF体外诱导细胞毒性与凋亡。(A)ZCA-LDH@DSF诱导凋亡的示意图。(B-D)CT26细胞与DSF、CA-LDH、ZCA-LDH、CA-LDH@DSF或ZCA-LDH@DSF在不同浓度下孵育12 h后的相对活力(均值±标准差,n=5)。(E)经不同处理后AM/PI标记的CT26细胞共聚焦图像,指示细胞活力。(F)通过RBH检测Cu离子显示CT26细胞在不同孵育时间摄取ZCA-LDH@DSF的共聚焦图像。(G)对照组与ZCA-LDH@DSF组差异表达基因的火山图。(H)对照组与ZCA-LDH@DSF组的主成分分析。(I)ZCA-LDH@DSF基因本体富集分析气泡图。(J)ZCA-LDH@DSF凋亡相关KEGG网络图。(K)不同处理组CT26细胞的细胞周期分布分析。(L)ZCA-LDH@DSF组与对照组凋亡通路GSEA富集图。(M)不同处理组PI和Annexin V-FITC染色的CT26细胞流式细胞术分析。(N)γ-H2AX免疫荧光染色显示ZCA-LDH@DSF诱导DNA损伤的共聚焦显微镜图像。

(3)体外实验中 ZCA -LDH@ DSF 诱导的铜死亡

ZCA-LDH@DSF处理后,KEGG分析揭示TCA循环、TNF信号通路、NOD样受体、cAMP信号通路和氧化磷酸化等铜死亡相关通路显著变化(图3B);铜死亡相关差异表达基因显示Dlat、Pdhb、Cdkn2aip和Gls上调,Mtf1、Dld、Lipt1和Lias下调(图3C)。共聚焦成像和蛋白质印迹显示,CA-LDH@DSF和ZCA-LDH@DSF组FDX1、LIAS水平显著下降,DLAT脂酰化显著增强,其中ZCA-LDH@DSF组DLAT聚集最显著(图3D-F、H、J、K);WB证实ZCA-LDH@DSF组DLAT聚集增强,表明Zn²⁺对铜死亡具有辅助作用(图3H)。ATP7A/7B蛋白在四个实验组中均显著低于对照组,ZCA-LDH@DSF组表达最低,表明Zn²⁺进一步减少Cu²⁺外排并加剧铜死亡(图3F、H、L)。细胞内Zn²⁺浓度随孵育时间延长而增加,6 h达最大值(图3G);ZCA-LDH@DSF组Cu²⁺水平显著高于其他组(图3I、M)。铜螯合剂TTM可浓度依赖性地改善ZCA-LDH@DSF组细胞活力,证实铜死亡被显著抑制。


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图3. ZCA-LDH@DSF体外诱导铜死亡的评价。(A)ZCA-LDH@DSF诱导铜死亡的示意图。(B)ZCA-LDH@DSF处理后差异表达基因的KEGG通路富集分析。(C)铜死亡通路相关差异表达基因热图,红色方块表示上调基因,蓝色方块表示下调基因。(D、E)不同处理组CT26细胞FDX1和DLAT免疫荧光染色。(F)不同处理组CT26细胞ATP7A免疫荧光染色。(G)ZP-1标记的ZCA-LDH@DSF被CT26细胞在不同孵育时间摄取的共聚焦图像。(H)CT26细胞中ATP7A、ATP7B、LIAS、DLAT和β-actin表达的蛋白质印迹结果。(I)RBH标记的不同处理组CT26细胞共聚焦图像。(J-M)细胞内FDX1、DLAT、ATP7A和RBH荧光强度统计(均值±标准差,n=5)。(N)CT26细胞与ZCA-LDH@DSF及不同浓度TTM(铜死亡抑制剂)孵育12 h后的相对活力(均值±标准差,n=5)。

(4)体外实验中 ZCA -LDH@ DSF 诱导的焦亡

ZCA-LDH@DSF处理后,GSEA显示炎症反应相关通路显著正富集(图4B);DEGs热图显示线粒体损伤和内质网应激相关基因显著变化(图4C)。Annexin V-FITC/PI共染色显示,ZCA-LDH@DSF组CT26细胞显著肿胀并产生大气泡,PI红色荧光明显,细胞膜完整性被破坏,且焦亡细胞显著多于CA-LDH@DSF组(图4D、F)。WB显示ZCA-LDH@DSF组caspase-1活化切割增加,GSDMD被切割后GSDMD-N表达升高(图4E)。共聚焦成像显示ZCA-LDH@DSF组CRT聚集显著、HMGB1下调(图4H、I),与其他组存在差异(图4J、K);WB证实上述现象(图4L)。ZCA-LDH@DSF组ATP分泌水平显著高于对照组(图4G)。凋亡、铜死亡和焦亡三种程序性细胞死亡整合于ZCA-LDH@DSF中,产生显著ICD效应(图4M)。


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图4. ZCA-LDH@DSF体外诱导焦亡和免疫原性细胞死亡(ICD)的评价。(A)ZCA-LDH@DSF诱导焦亡的示意图。(B)ZCA-LDH@DSF组与对照组炎症反应通路GSEA富集图。(C)线粒体损伤、内质网应激和炎症小体组装相关基因热图,红色方块表示上调基因,蓝色方块表示下调基因。(D)不同处理后Annexin V-FITC和碘化丙啶(PI)染色的CT26细胞共聚焦图像。(E)CT26细胞中GSDMD、Caspase-1、GSDMD-N、cleaved Caspase-1和β-actin表达的蛋白质印迹结果。(F)不同处理后CT26细胞焦亡比例(均值±标准差,n=5)。(G)不同处理组细胞培养基中ATP释放水平(均值±标准差,n=5)。(H、I)不同处理后CT26细胞CRT和HMGB1免疫荧光染色。(J、K)细胞内CRT和核内HMGB1荧光强度统计(均值±标准差,n=5)。(L)CT26细胞中CRT、HMGB1和β-actin表达的蛋白质印迹结果。(M)ZCA-LDH@DSF诱导ICD的示意图,有利于T细胞激活和抗肿瘤免疫应答。

(5)ZCA-LDH@DSF NSs的体内抗肿瘤效果

肿瘤接种7天后,荷瘤小鼠随机分为5组(n=5):对照组、CA-LDH组(2.5 mg/kg)、ZCA-LDH组(2.5 mg/kg)、CA-LDH@DSF组(2.5 mg/kg + 5 mg/kg DSF)和ZCA-LDH@DSF组(2.5 mg/kg + 5 mg/kg DSF),于第0、2、4天接受三次治疗(图5A)。CA-LDH和ZCA-LDH部分抑制肿瘤生长,CA-LDH@DSF和ZCA-LDH@DSF具有显著肿瘤抑制效果,其中ZCA-LDH@DSF治疗效果最强并显著延长生存时间(图5B、C);治疗期间小鼠体重保持稳定(图5D)。H&E染色显示ZCA-LDH@DSF组肿瘤组织呈现显著病理损伤,包括核溶解、碎裂和淋巴细胞浸润(图5E);Ki67荧光染色显示该组肿瘤细胞增殖显著减少(图5F、G)。ICP-OES显示ZCA-LDH@DSF在肿瘤中滞留超过两周(图5H)。免疫荧光染色显示ZCA-LDH@DSF组ATP7A/7B表达显著降低,DLAT和N-GSDMD表达明显增加(图5I-N);CRT高表达和HMGB1释放证实其诱导强效ICD(图5J、O、P)。


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图5. ZCA-LDH@DSF体内抗肿瘤效应。(A)ZCA-LDH@DSF治疗CT26皮下肿瘤模型流程示意图。(B)不同处理后小鼠平均肿瘤生长曲线。(C)不同处理后小鼠60天监测期生存率曲线。(D)治疗期间小鼠体重变化。(E、F)不同处理后肿瘤组织切片H&E和Ki67染色。(G)Ki67表达荧光强度统计(均值±标准差,n=5)。(H)瘤内注射后通过ICP-OES检测Zn²⁺和Cu²⁺以评估ZCA-LDH@DSF在肿瘤内的滞留。(I、J)肿瘤切片荧光图像,用于评估ATP7A、ATP7B、DLAT、N-GSDMD、CRT和HMGB1表达。(K-P)ATP7A、ATP7B、DLAT、N-GSDMD、CRT和HMGB1荧光强度统计,揭示体内多重细胞死亡现象(均值±标准差,n=5)。

(6)体内免疫应答与联合免疫治

ZCA-LDH@DSF治疗后,淋巴结中DC成熟显著增加(图6E);肿瘤内Tregs数量显著减少(图6B),总淋巴细胞、NKT细胞和辅助性T细胞等效应免疫细胞数量显著增加(图6C、D、G-J);组织学染色显示大量免疫细胞被招募至肿瘤(图6K、L);M1巨噬细胞侵入频率显著增加,M2巨噬细胞被抑制(图6F)。


在双侧荷瘤小鼠模型中,小鼠随机分为4组(n=5):对照组、αPD-L1组(20 μg/只,静脉注射)、ZCA-LDH@DSF组(2.5 mg/kg,瘤内注射)和联合组。ZCA-LDH@DSF于第0、2、4天瘤内注射,αPD-L1于第1、3、5天静脉注射(图6M)。与原发肿瘤相比,ZCA-LDH@DSF组和联合组肿瘤增殖受抑,联合组抑制效果最显著(图6N);联合组远端肿瘤生长远优于其他三组(图6Q)。免疫荧光显示联合组双侧肿瘤中CTL浸润显著增加,αPD-L1表达显著降低(图6O、R)。ZCA-LDH@DSF诱导多种程序性细胞死亡触发T细胞介导的抗肿瘤免疫,与免疫检查点抑制剂联合有效抑制肿瘤生长和转移(图6P)。


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图6. ZCA-LDH@DSF诱导的体内免疫应答及与αPD-L1联合的抗肿瘤效应。(A)免疫评价流程示意图。(B-D)不同处理后肿瘤内Tregs(B)、T细胞(C)和CD4⁺ T细胞(D)的流式细胞术分析。(E-J)不同处理后肿瘤内成熟DC、M1巨噬细胞、NK细胞、T细胞、CD4⁺ T细胞和CD8⁺ T细胞的定量分析(均值±标准差,n=5)。(K、L)不同组CD4⁺和CD8⁺ T细胞的免疫荧光染色。(M)ZCA-LDH@DSF联合αPD-L1治疗双侧CT26皮下肿瘤小鼠流程示意图。(N)不同处理后原发肿瘤平均及个体生长曲线(G1:对照组;G2:αPD-L1;G3:ZCA-LDH@DSF;G4:ZCA-LDH@DSF + αPD-L1)(均值±标准差,n=5,p < 0.05,p < 0.01,p < 0.001)。(O)不同组原发肿瘤中CD4⁺ T细胞、CD8⁺ T细胞和PD-L1表达的免疫荧光染色图像。(P)ZCA-LDH@DSF联合αPD-L1激活免疫系统的示意图。(Q)不同处理后远端肿瘤平均及个体生长曲线。(R)不同组远端肿瘤中CD4⁺ T细胞、CD8⁺ T细胞和PD-L1表达的免疫荧光图像。

 研究小结 

该研究针对肿瘤酸中毒与腺苷蓄积导致的T细胞耗竭、细胞毒性抑制及放射抵抗等关键代谢异常,开发了负载CD73抑制剂PSB-12379pH响应性双金属LDH纳米片(LDH@PSB)。该纳米片在酸性肿瘤微环境中快速降解,同步实现细胞外pH中和与PSB-12379释放,阻断放疗诱导的CD73上调及ATP向免疫抑制性腺苷的水解;同时释放的Mn²⁺激活cGAS-STING通路,与放疗协同放大免疫原性细胞死亡。双重代谢干预显著降低PD-1TIGIT等耗竭标志物表达,促进效应细胞因子产生,重振T细胞功能。在B16F10黑色素瘤和CT26结肠癌模型中,LDH@PSB联合放疗有效抑制肿瘤生长、延长生存期,增加肿瘤浸润CD8⁺T细胞并增强其细胞毒功能;与抗PD-1联合可诱发全身性免疫应答以根除远处肿瘤。该策略通过同时缓解酸中毒、破坏腺苷介导的免疫抑制并激活先天与适应性免疫,为增强实体瘤放射免疫治疗提供了新思路。

上一页:IF:14.1《Adv. Sci.》上海交通大学杨雯隽、复旦大学丁琛、新疆医科大学郭文佳团队:TEAD1增强外泌体分泌并促进外泌体介导的组织再生
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